Synthesis and Analysis of Biologics 3900-BT1-6
Harmonogram zajęć
Tydzień 1
Dzień 1
Wprowadzenie: struktura kursu i omówienie planowanych syntez.
Szkolenie z zasad bezpieczeństwa: omówienie technik laboratoryjnych wykorzystywanych podczas zajęć (praca w warunkach bezwodnych, praca z odczynnikami wrażliwymi na wilgoć, synteza w roztworze, synteza na fazie stałej, obsługa urządzeń pracujących pod obniżonym ciśnieniem – wyparki rotacyjne, pompy, liofilizator), praca z odczynnikami organicznymi oraz zasady bezpieczeństwa.
Synteza i oczyszczanie modyfikowanego bloku budulcowego do syntezy RNA na fazie stałej: modyfikacja komercyjnego fosforoamidytu adenozyny w warunkach PTC oraz obróbka mieszaniny poreakcyjnej.
Dni 2–3
Synteza analogu kapu mRNA:
– oczyszczanie modyfikowanego bloku budulcowego,
– synteza i oczyszczanie dinukleotydowego fragmentu analogu kapu.
Tydzień 2 – Synteza analogu kapu mRNA (kontynuacja)
Dzień 1
Aktywacja dinukleotydu: przygotowanie reakcji, monitorowanie jej przebiegu oraz wytrącanie produktu.
Dni 2–3
Końcowy etap syntezy analogu kapu: przygotowanie reakcji, monitorowanie jej przebiegu oraz wstępna obróbka mieszaniny poreakcyjnej.
Tydzień 3 – Synteza analogu kapu mRNA (kontynuacja)
Oczyszczanie końcowego produktu metodą chromatografii jonowymiennej i preparatywnej HPLC. Charakterystyka produktu metodami MS i NMR oraz kontrola jakości.
Tydzień 4 – Automatyczna synteza modyfikowanego oligonukleotydu
Dzień 1
Przygotowanie syntezatora, przygotowanie odpowiednich roztworów i odczynników oraz monitorowanie przebiegu reakcji.
Dzień 2
Obróbka mieszaniny poreakcyjnej i usuwanie grup ochronnych z oligonukleotydu.
Dzień 3
Oczyszczanie oligonukleotydu poprzez wytrącanie i/lub preparatywną HPLC.
Tydzień 5 – Reakcje biokoniugacji i seminarium końcowe
Dni 1–2
Wybrane reakcje biokoniugacji i modyfikacji oligonukleotydów (sprzęganie amidowe, „click chemistry”). Praca w mikroskali oraz monitorowanie przebiegu reakcji metodą HPLC.
Dzień 3
Seminarium grupowe: prezentacja i omówienie uzyskanych wyników.
Koordynatorzy przedmiotu
Rodzaj przedmiotu
Tryb prowadzenia
Założenia (opisowo)
Efekty uczenia się
Wiedza – student zna i rozumie:
1. podstawowe strategie stosowane w syntezie modyfikowanych nukleotydów, analogów kapu mRNA oraz modyfikowanych oligonukleotydów;
2. zasady syntezy w roztworze i na fazie stałej w kontekście chemii nukleotydów i oligonukleotydów;
3. rolę grup ochronnych oraz aktywowanych bloków budulcowych w syntezie oligonukleotydów;
4. zasady automatycznej syntezy oligonukleotydów na fazie stałej;
5. główne techniki oczyszczania biomolekuł, w tym chromatografię jonowymienną, chromatografię w odwróconym układzie faz oraz preparatywną HPLC;
6. zastosowanie i ograniczenia metod analitycznych wykorzystywanych do charakterystyki nukleotydów i oligonukleotydów, w tym HPLC, NMR i MS;
7. podstawowe zasady postsyntetycznej modyfikacji oligonukleotydów z wykorzystaniem reakcji biokoniugacji.
Umiejętności – student potrafi:
1. przeprowadzać wybrane wieloetapowe procedury syntezy pochodnych nukleotydów i związków opartych na oligonukleotydach;
2. bezpiecznie pracować z rozpuszczalnikami organicznymi, odczynnikami wrażliwymi na wilgoć, barwnikami fluorescencyjnymi oraz układami chromatograficznymi;
3. monitorować przebieg reakcji z wykorzystaniem TLC i HPLC;
4. dobierać i stosować odpowiednie techniki oczyszczania produktów pośrednich, produktów końcowych i modyfikowanych oligonukleotydów;
5. przygotowywać próbki do analiz NMR, MS i HPLC;
6. interpretować podstawowe dane analityczne w celu potwierdzenia tożsamości produktu i oceny jego czystości;
7. identyfikować typowe problemy występujące podczas syntezy i oczyszczania, takie jak niepełna konwersja, degradacja produktu, niska wydajność odzysku lub niewystarczająca czystość;
8. przygotowywać szczegółowe sprawozdania laboratoryjne zawierające opis procedur eksperymentalnych, dane analityczne oraz omówienie wyników.
Kompetencje społeczne – student jest gotów do:
1. planowania i organizowania pracy laboratoryjnej w ramach wieloetapowego projektu syntetycznego;
2. efektywnej i bezpiecznej pracy w zespole laboratoryjnym;
3. krytycznej analizy i dyskusji wyników eksperymentalnych oraz odnoszenia ich do zastosowanej strategii syntezy;
4. przedstawiania wyników pracy laboratoryjnej w jasny i uporządkowany sposób podczas seminarium grupowego;
5. krytycznej oceny wiarygodności danych analitycznych potwierdzających tożsamość i jakość otrzymanych związków.
Kryteria oceniania
Egzamin ma formę testu wielokrotnego wyboru obejmującego materiał przedstawiony podczas wykładów. Trwa maksymalnie 90 minut i składa się z maksymalnie 30 pytań lub zadań, z których każde jest punktowane indywidualnie. Maksymalna liczba punktów możliwych do uzyskania wynosi 100.
Ocena końcowa jest ustalana na podstawie procentowej liczby punktów uzyskanych w stosunku do maksymalnej liczby punktów:
do 50% – niedostateczny (2,0)
51–60% – dostateczny (3,0)
61–70% – dostateczny plus (3,5)
71–80% – dobry (4,0)
81–90% – dobry plus (4,5)
91–100% – bardzo dobry (5,0)
Do zaliczenia egzaminu wymagane jest uzyskanie co najmniej 51% maksymalnej liczby punktów.
Dopuszczalne są maksymalnie dwie nieobecności. W przypadku wieloetapowych eksperymentów prowadzonych w parach, aby możliwa była kontynuacja pracy, wymagana jest obecność co najmniej jednej osoby z pary.
Literatura
Modyfikacja fosforoamidytów i synteza analogów kapu:
Kamil Ziemkiewicz, Marcin Warminski, Radoslaw Wojcik, Joanna Kowalska, Jacek Jemielity; Quick Access to Nucleobase-Modified Phosphoramidites for the Synthesis of Oligoribonucleotides Containing Post-Transcriptional Modifications and Epitranscriptomic Marks. Journal of Organic Chemistry, 5 August 2022; 87(15): 10333–10348. https://doi.org/10.1021/acs.joc.2c01390
Marcin Warminski et al.; Trinucleotide mRNA Cap Analogue N6-Benzylated at the Site of Posttranscriptional m6Am Mark Facilitates mRNA Purification and Confers Superior Translational Properties In Vitro and In Vivo. Journal of the American Chemical Society, 27 March 2024; 146(12): 8149–8163. https://doi.org/10.1021/jacs.3c12629
Synteza na fazie stałej i chemia kwasów nukleinowych:
The Nucleic Acids Book, rozdział 5:
https://atdbio.com/nucleic-acids-book
Reakcje biokoniugacji:
Hermanson, G. (2013). Bioconjugate Techniques, 3rd Edition, 1–1146. DOI: 10.1016/B978-0-12-382239-0.00005-4.